Controle da Qualidade da Água em Bacias Hidrográficas e Água do Mar
Plâncton é formado de organismos microscópicos, incluindo algas e protozoários, que flutuam à deriva em grande número em água doce ou salgada e servem de alimento para peixes e outros organismos maiores. O plâncton é formado pelo fitoplâncton, que são plantas microscópicas e pelo zoo plâncton que são os animais microscópicos.
Informações gerais sobre como coletar amostras de plâncton
Existem vários métodos para a amostragem do plâncton de um lago ou lagoa. O método mais comum é puxar uma rede fina através da água, na vertical ou na horizontal, e depois recolher os animais que tenham sido retidos pela rede. Um outro método comum é a utilização de um dispositivo em forma de caixa chamada de armadilha Schindler-Patalas.
A escolha de um método particular ou um conjunto de métodos depende das características do lago (profundidade, densidade de algas, etc.) e o próprio zoo plâncton.
Quantas amostras?
O zoo plâncton pode exibir um alto grau de variação espacial, mesmo considerando apenas a região de águas abertas de um lago e além disso existem outros fatores incluindo correntes de água e rápido crescimento da população em locais onde a biomassa de fitoplâncton é alta.
Existem métodos estatísticos para identificar o número de amostras necessário para caracterizar com precisão o zoo plâncton em um determinado momento em um lago. Isso requer amostragem preliminar em muitos locais e algumas estatísticas simples. Um estudo preliminar fornece o contexto, de modo que o investigador pode interpretar os resultados da amostragem.
Se um estudo tem como objetivo geral caracterizar o zoo plâncton de uma determinada região geográfica, e requer amostragem de muitos lagos, ele só pode ser viável para provar um local em cada lago ou grande bacia de lagos. Em reservatórios alongados, as amostras são tipicamente recolhidas em vários locais ao longo do eixo devido à química distinta da água, fitoplâncton e zoo plâncton.
Resumindo, o regime de amostragem deve ser baseado em uma sólida compreensão das condições do lago e das perguntas feitas no projeto de pesquisa.
Frequência de Amostragem
Biomassa de zoo plâncton pode variar consideravelmente de mês a mês e entre anos sucessivos. Rápido aumento na biomassa pode ocorrer em apenas uma semana em resposta a uma floração de algas e bactérias ou a um aumento na temperatura da água. Quedas súbitas na biomassa podem acontecer em resposta à intensa predação dos peixes, colapso da proliferação de algas, e outros fatores.
O investigador deve realizar alguns preliminares de amostragem com uma frequência relativamente alta, a fim de compreender a medida entre os picos principais de biomassa zoo plâncton ou alterações importantes na estrutura taxonômica.
Métodos de Amostragem
São três os métodos comuns de amostragem. As redes são utilizadas na maioria das vezes; são dispositivos cônicos feitos de nylon de malha fina que é puxada através da água na vertical ou na horizontal, por uma distância conhecida. Os animais são capturados num frasco de armazenamento para a contagem. A quantidade de água a partir do qual são removidos zoo plâncton está estimado como o comprimento do reboque vezes boca diâmetro do líquido.
O amostrador tipo armadilha mais comum é a armadilha Schindler-Patalas: é uma caixa de plástico transparente levada a uma profundidade desejada na coluna de água e, em seguida, rapidamente fechada e puxada para cima e levantada na água. Quando levantada para o barco, a água é filtrada numa pequena rede de malha que é fixada à parede inferior da caixa, e zoo plâncton fica recolhido dentro de um balde de recolha de amostras.
Este dispositivo proporciona um elevado grau de certeza sobre o volume real da amostra de água, mas se a coluna de água é profunda, e são muitas amostras para recolher animais de todas as profundidades.
O terceiro método é um tubo, feito de PVC comum ou Tygon. Um tubo é baixado para dentro da coluna de água, e quando a parte inferior atinge a profundidade desejada (perto dos sedimentos), uma linha é puxada para fechar o fundo com uma rolha de borracha ou outro dispositivo. O tubo é levantado para dentro do barco e a água coletada é filtrada através de uma rede para recolher o zooplâncton. Este dispositivo proporciona também um elevado grau de certeza sobre o volume de água da amostra, mas pode não ser uma forma eficaz de amostra para grandes animais que ocorrem a uma densidade baixa, ou de animais que podem detectar e escapar do dispositivo.
Preservação da Amostra
Preserve o zoo plâncton recentemente colhido com solução de formol-sacarose 40% refrigerada a cerca de 5 graus C antes do uso. Adicionar cerca de 2 gramas de sacarose (açúcar de mesa). Adicione uma quantidade suficiente de conservante à amostra para se atingir uma concentração final de cerca de 40% de formalina. A formalina preserva os animais. O efeito combinado de sacarose, resfriamento e preservativo evita a distorção de corpos. Mantenha as amostras conservadas em recipientes herméticos sob condições de refrigeração para obter melhores resultados.
Contagem e estimativa de biomassa
Simples contagens de zoo plâncton podem ser feitas com um microscópio. Para espécies grandes de zoo plâncton tais como dáfnias, que ocorrem em densidades relativamente baixas (1 a 100 por litro), a amostra pode ser digitalizada com uma ampliação baixa. Para zoo plâncton como rotíferos e náuplios de copépodes, que ocorrem em densidades elevadas (> 1000 por litro), é prática padrão contar uma percentagem conhecida do volume da amostra em alta ampliação, e depois multiplicar pelo volume total / volume contado a obter o número total de animais na amostra.
Depois de saber o número de animais de cada espécie em uma amostra, a densidade no lago é estimado como contagens dividindo pelo volume de água filtrada com a rede ou coletadas pela armadilha ou tubo.
Frequência de Amostragem
Biomassa de zoo plâncton pode variar consideravelmente de mês a mês e entre anos sucessivos. Rápido aumento na biomassa pode ocorrer em apenas uma semana em resposta a uma floração de algas e bactérias ou a um aumento na temperatura da água. Quedas súbitas na biomassa podem acontecer em resposta à intensa predação dos peixes, colapso da proliferação de algas, e outros fatores.
O investigador deve realizar alguns preliminares de amostragem com uma frequência relativamente alta, a fim de compreender a medida entre os picos principais de biomassa zoo plâncton ou alterações importantes na estrutura taxonômica.
Métodos de Amostragem
São três os métodos comuns de amostragem. As redes são utilizadas na maioria das vezes; são dispositivos cônicos feitos de nylon de malha fina que é puxada através da água na vertical ou na horizontal, por uma distância conhecida. Os animais são capturados num frasco de armazenamento para a contagem. A quantidade de água a partir do qual são removidos zoo plâncton está estimado como o comprimento do reboque vezes boca diâmetro do líquido.
O amostrador tipo armadilha mais comum é a armadilha Schindler-Patalas: é uma caixa de plástico transparente levada a uma profundidade desejada na coluna de água e, em seguida, rapidamente fechada e puxada para cima e levantada na água. Quando levantada para o barco, a água é filtrada numa pequena rede de malha que é fixada à parede inferior da caixa, e zoo plâncton fica recolhido dentro de um balde de recolha de amostras.
Este dispositivo proporciona um elevado grau de certeza sobre o volume real da amostra de água, mas se a coluna de água é profunda, e são muitas amostras para recolher animais de todas as profundidades.
O terceiro método é um tubo, feito de PVC comum ou Tygon. Um tubo é baixado para dentro da coluna de água, e quando a parte inferior atinge a profundidade desejada (perto dos sedimentos), uma linha é puxada para fechar o fundo com uma rolha de borracha ou outro dispositivo. O tubo é levantado para dentro do barco e a água coletada é filtrada através de uma rede para recolher o zooplâncton. Este dispositivo proporciona também um elevado grau de certeza sobre o volume de água da amostra, mas pode não ser uma forma eficaz de amostra para grandes animais que ocorrem a uma densidade baixa, ou de animais que podem detectar e escapar do dispositivo.
Preservação da Amostra
Preserve o zoo plâncton recentemente colhido com solução de formol-sacarose 40% refrigerada a cerca de 5 graus C antes do uso. Adicionar cerca de 2 gramas de sacarose (açúcar de mesa). Adicione uma quantidade suficiente de conservante à amostra para se atingir uma concentração final de cerca de 40% de formalina. A formalina preserva os animais. O efeito combinado de sacarose, resfriamento e preservativo evita a distorção de corpos. Mantenha as amostras conservadas em recipientes herméticos sob condições de refrigeração para obter melhores resultados.
Contagem e estimativa de biomassa
Simples contagens de zoo plâncton podem ser feitas com um microscópio. Para espécies grandes de zoo plâncton tais como dáfnias, que ocorrem em densidades relativamente baixas (1 a 100 por litro), a amostra pode ser digitalizada com uma ampliação baixa. Para zoo plâncton como rotíferos e náuplios de copépodes, que ocorrem em densidades elevadas (> 1000 por litro), é prática padrão contar uma percentagem conhecida do volume da amostra em alta ampliação, e depois multiplicar pelo volume total / volume contado a obter o número total de animais na amostra.
Depois de saber o número de animais de cada espécie em uma amostra, a densidade no lago é estimado como contagens dividindo pelo volume de água filtrada com a rede ou coletadas pela armadilha ou tubo.
Aplicação na Prática do BIOMAX
A aplicação do produto deve ocorrer por toda a área do lago, efluente, fossa e etc., Aplicando 1 quilo do BIOMAX para cada 1 hectare (10.000m²). Para auxiliar na dispersão é indicado a diluição do produto direto com a água do lago ou efluente. Os microrganismos não têm locomoção própria, portanto deve ser distribuído por toda a área. Essa dispersão pode ocorrer por lançamento manual, ou com auxílio de um barco, o que propicia uma melhor disposição. Pode-se usar a propulsão como forma homogeneização.
Aplicação na Prática do BIOMAX
A aplicação do produto deve ocorrer por toda a área do lago, efluente, fossa e etc., Aplicando 1 quilo do BIOMAX para cada 1 hectare (10.000m²). Para auxiliar na dispersão é indicado a diluição do produto direto com a água do lago ou efluente. Os microrganismos não têm locomoção própria, portanto deve ser distribuído por toda a área. Essa dispersão pode ocorrer por lançamento manual, ou com auxílio de um barco, o que propicia uma melhor disposição. Pode-se usar a propulsão como forma homogeneização.
BIOMAX SNatural
Quantidades Comercializadas pela SNatural
BIOMAX SNatural
Quantidades Comercializadas pela SNatural
Advertências: O BIOMAX não é patogênico, não causam riscos ao contato de humanos. É de origem natural da microfauna brasileira. Nº de registro na ANVISA: 3.2806.0002.002-6.
Precauções: Não aplicar sobre alimentos, utensílios de cozinha, aquários e superfícies onde haja manipulação de alimentos. Não reutilizar a embalagem vazia. Manter o produto na embalagem original. Em caso de contato com o produto lavar parte atingida com água e sabão. Em caso de contato com os olhos lavar com água corrente em abundância e procurar o centro de intoxicação (CEATOX – SP [0xx11] 5012-5311 / 0800-7713733 [Atendimento 24h]) levando a embalagem ou o rótulo do produto. Conserve fora do alcance de crianças e animais domésticos. Em caso de aspiração ou inalação remover a pessoa para local arejado.
